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如何正确使用超滤离心管?注意事项和常见问题解答
日期:2025-12-02

如何正确使用超滤离心管?注意事项和常见问题解答

 

超滤离心管(Ultrafiltration Centrifugal Filter)是一种用于蛋白浓缩、缓冲液更换、核酸纯化、小分子去除的高效实验工具。正确操作不仅能提高样品回收率,也能确保过滤效率与实验重复性。

Centrifugal Filters-01.png

一、使用前准备

 1. 选择合适的 MWCO

根据实验所需截留的目标分子量选择对应的 MWCO(如 10 kDa、30 kDa、50 kDa 等)。

 2. 预润湿过滤膜

部分膜材质需要预润湿以提升通量;GVS超滤离心管采用PES 膜具有天然亲水性,通常不需要预处理。

 3. 检查离心兼容性

阅读规格参数,确认以下内容:

· 最大离心力(RCF)

· 是否用于角式或水平转子

· 适配的离心机类型

二、超滤离心管的标准操作步骤

步骤 1:加入样品

1. 打开离心管的盖子。

2. 将样品加入上层过滤仓,通常不超过最大容量的 2/3

3. 若样品黏度高,可采用分次加入方式。

步骤 2:平衡离心

与普通离心操作一致,需要配平离心管:

· 确保重量匹配

· 保持对称放置

这可保证转子平衡、延长离心机寿命,并避免样品飞溅。

 

步骤 3:设定离心条件

根据产品说明书设置:

· 转速:如 3,000–5,000 × g(示例,视产品型号)

· 时间:10–30 分钟,随体积和通量而变化

· 温度:建议 4°C 或室温,视样品稳定性而定

离心过程中,溶液会透过超滤膜进入下层收集室,而大分子(如蛋白或核酸)被截留在上层。

 

步骤 4:检查浓缩结果

离心结束后:

· 观察上层截留液体体积

· 若浓缩不足,可延长离心时间

· 若过度浓缩,可加入缓冲液重新调整体积并轻轻混匀

 

步骤 5:缓冲液更换(可选)

用于蛋白、核酸分析前处理:

1. 在完成首次浓缩后加入目标缓冲液

2. 再次离心至所需体积

3. 重复 1–2 次即可完成 Buffer Exchange

 

步骤 6:收集样品

截留液通常是目标分子所在的部分:

· 将上层滤杯取出

· 使用移液器收集截留样品

· 若样品粘附膜表面,可轻轻反 pipette 几次进行回收
PES 膜低吸附,可提高回收率)

 

三、使用过程中的常见问题与解决方案

1. 过滤太慢?

可能原因:

· 样品黏度高

· 转速不足

· 过滤膜未完全润湿

· 温度过低影响流体性

解决方式:
 提前预热样品
 提高离心力(在允许范围内)
 避免样品中颗粒物堵塞膜

 

2. 样品回收率低?

可能原因:

· MWCO 选择不当

· 离心过度导致样品干膜

· 未回收附着在膜表面的液体

建议:
 选择更适合的 MWCO
 离心后立即回收
 轻轻反复吹打(pipette up & down)提升回收率

 

四、注意事项与操作安全

· 不可超过最大离心力

· 不可混用不同品牌离心转子

· 避免样品含颗粒物(建议预过滤)

· 如需灭菌,需确认产品是否可高压灭菌

· 每次使用后及时检查膜完整性

 

结合优化设计的GVS 超滤离心管(双面膜结构、更大过滤面积、PES 高通量膜),可显著缩短过滤时间并提升回收率,是实验室高效超滤操作的理想选择。

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